Development of an efficient wheat transformation method  Page description

Help  Print 
Back »

 

Details of project

 
Identifier
48480
Type K
Principal investigator Sági, László
Title in Hungarian Hatékony búzatranszformációs módszer kidolgozása
Title in English Development of an efficient wheat transformation method
Panel Plant and animal breeding
Department or equivalent Department of Plant Cell Biology (Centre for Agricultural Research)
Participants Tamás, László
Starting date 2005-10-01
Closing date 2010-09-30
Funding (in million HUF) 17.030
FTE (full time equivalent) 3.29
state closed project





 

Final report

 
Results in Hungarian
Különböző in vitro rendszerekben kimutattuk az agrobaktérium hatékony fizikai kapcsolódását és vir indukcióját. Húsz kenyérbúza fajta növényregenerációs képességének összehasonlító elemzéséből (portokkultúra, éretlen és érett embrió, érett szkutellum) megállapítottuk, hogy a leghatékonyabb rendszer az érett embrión alapszik, de univerzálisan kiemelkedő fajtát nem találtunk. Az érett embrió agrobaktériumos transzformációjának egyes paramétereinek optimalizációjával 45% tranziens génexpressziót értünk el. Végül gyors és hatékony in planta transzformációs módszert fejlesztettünk ki búza csíranövényekre, melyet kiterjesztettünk más gabonafélékre is. Az in planta transzformációval kapott transzgénikus események gyors kimutatásának érdekében két, a pCAMBIA1391z jelzésű alapvektorból készített expressziós vektort úgy módosítottunk, hogy közös szelekciós markergénjük (hptII) búzában nem elég aktív (35S) promóterét egy erős konstitutív promóterrel (Act1) cseréltük fel (pKOL1). Ezután a riporter génekhez (intront tartalmazó gfp vagy gusA) kapcsoltunk egy másik konstitutív (Ubi1) promótert (pKOL2 illetve pKOL3), majd ezt felváltottuk egy endospermium-specifikus promóterrel (pKOL4 ill. pKOL5). Végül készítettünk két olyan vektort is, melyek vagy egy nagy molekulatömegű (HMW) glutenin alegységfehérje génjét (1Ax2*B, pKOL6), vagy pedig a ‘Porcine Epidemic Diarrhea’ vírus egy antigén fehérje génjét (pKOL7) tartalmazták egyaránt az említett endospermium-specifikus promóterhez kapcsolva.
Results in English
In the early steps of fast in planta transformation we have shown that in several culture systems attachment and vir induction of agrobacteria is efficiently completed. Comparative analysis of plant regeneration capacity (anther culture, immature and mature embryo, mature scutellum) in twenty bread wheat cultivars revealed that the mature embryo system is the most efficient, but a universally excellent cultivar was not identified. By the optimization of several parameters for Agrobacterium transformation of mature embryos were optimized a transient gene expression frequency of 45% was reached. Finally, a fast in planta transformation tool was developed on the basis of wheat seedlings, which was extended to other cereals. For the quick detection of transgenic events obtained by in planta transformation two expression vectors (based on pCAMBIA1391z) were modified so that the less active 35S promoter of their selectable marker gene (nptII) was replaced by the strong constitutive Act1 promoter, resulting pKOL1. Next, a constitutive promoter (Ubi1) was fused to each of the two riporter genes (intron containing gfp or gusA, pKOL2 and pKOL3, respectively), which was then exchanged with an endosperm-specific promoter (pKOL4 and pKOL5, resp.). Finally, two more vectors were constructed for the expression of either a HMW glutenin gene (1Ax2*B, pKOL6) or an antigenic protein gene of the Porcine Epidemic Diarrhea virus (pKOL7), both genes controlled by the same endosperm-specific promoter.
Full text https://www.otka-palyazat.hu/download.php?type=zarobeszamolo&projektid=48480
Decision
Yes





 

List of publications

 
Tamás C, Némethné Kisgyörgy B, Mészáros K, Rakszegi M, Tamás L, Sági L, Bedő Z: Búza biolisztikus transzformáció egyes paramétereinek vizsgálata és szemléltetése, XII. Növénynemesítési Tudományos Napok összefoglalói, 2006
Kisgyörgy BN, Tamás C, Rakszegi M, Sági L, Láng L, Bedő Z: Regeneration ability of wheat (Triticum aestivum L.) embryos after bombardment with a particle gun, Acta Biologica Szegediensis 52: 127-130, 2008
Oszvald M, Gárdonyi M, Tamás C, Takács I, Jenes B, Tamás L: Development and characterization of a chimaeric tissue-specific promoter in wheat and rice endosperm, In Vitro Cellular Developmental Biology Plant 44: 1-7, 2008
Sági L, Rakszegi M, Spitkó T, Mészáros K, Németh-Kisgyörgy B, Soltész A, Szira F, Ambrus H, Mészáros A, Galiba G, Vágújfalvi A, Barnabás B, Marton LC: Genetic modification of cereals in the Agricultural Research Institute of the Hungarian Academy of Sciences, Acta Agronomica Hungarica 56: 443-448, 2008
Mészáros K, Ambrus H, Kiss T, Földesi Füredi P, Dőry M, Karsai I, Barnabás B, Láng L, Bedő Z, Sági L: Optimization of Agrobacterium-mediated transformation in wheat and maize, In: Veisz O. (ed.) Tradition and Progress in Plant Breeding. pp 332-336, 2009
Dőry M: Agrobacterium-mediated transformation in wheat, MSc thesis at Eötvös Loránd University, 51 p., 2009
Mészáros K, Kiss T, Dőry M, Karsai I, Láng L, Bedő Z, Sági L: Optimization of Agrobacterium-mediated transformation in wheat cultivars registered at Martonvásár: plant regeneration and transient gene expression, Növényvédelem (Plant Protection) 45: 688-693, 2009
Tamás L: Molecular farming, using the cereal endosperm as bioreactor, Acta Agronomica Hungarica 58: 55-64, 2010




Back »